Pós-graduação
  1. Química Física  1.1. Termodinâmica  1.1.1. Leis da Termodinâmica  1.1.2. Entalpia e capacidade térmica  1.1.3. Entropia e energia livre  1.1.4. Equilíbrio de Fases  1.1.5. Termodinâmica estatística  1.1.6. Ciclo termodinâmico  1.1.7. Fugacidade e atividade  1.2. Química Quântica  1.2.1. Princípios da mecânica quântica  1.2.2. Equação de Schrödinger  1.2.3. Partícula em uma caixa  1.2.4. Operadores e autovalores  1.2.5. Orbitais atômicos  1.2.6. Teoria do orbital molecular  1.2.7. Teoria de Perturbação  1.2.8. Teoria de ligação de valência  1.2.9. Hibridização e ligação química  1.3. Cinética química  1.3.1. Leis de velocidade e mecanismos de reação  1.3.2. Teoria das colisões  1.3.3. Teoria do estado de transição  1.3.4. Cinética Enzimática  1.3.5. Reações em Cadeia e Polimerização  1.3.6. Reações fotoquímicas  1.4. Mecânica estatística  1.4.1. Funções de Partição  1.4.2. Funções de distribuição molecular  1.4.3. Distribuição de Boltzmann  1.4.4. Estatísticas de Bose–Einstein e Fermi–Dirac  1.5. Espectroscopia  1.5.1. Rotational Spectroscopy  1.5.2. Espectroscopia Vibracional  1.5.3. Espectroscopia Eletrônica  1.5.4. Espectroscopia de ressonância magnética nuclear  1.5.5. Espectrometria de Massa  1.5.6. Espectroscopia Raman  1.5.7. Espectroscopia de ressonância paramagnética eletrônica  1.6. Química de superfícies e coloidal  1.6.1. Isoterma de absorção  1.6.2. Tensão Superficial e Molhabilidade  1.6.3. Estabilidade Coloidal  1.6.4. Catalysis  1.6.5. Emulsões e micelas  1.7. Eletroquímica  1.7.1. Equação de Nernst  1.7.2. Células eletroquímicas  1.7.3. Condutividade e mobilidade  1.7.4. Guerra  1.7.5. Células de combustível  1.7.6. Eletrólise
  2. Química orgânica  2.1. Mecanismo de Reação  2.1.1. Reações de substituição nucleofílica  2.1.2. Reações de adição eletrofílica  2.1.3. Reações de eliminação  2.1.4. Reações de rearranjo  2.1.5. Reações radicais  2.1.6. Reações pericíclicas  2.2. Espectroscopia e determinação estrutural  2.2.1. Espectroscopia UV-Vis  2.2.2. Espectroscopia IR  2.2.3. Espectroscopia de RMN  2.2.4. Espectrometria de Massas  2.2.5. Cristalografia de Raios X  2.3. Estereoscópico  2.3.1. Quiralidade e atividade óptica  2.3.2. Análise estrutural  2.3.3. Isomerismo geométrico  2.3.4. Dynamic Stereochemistry  2.4. Química Organometálica  2.4.1. Reagentes organolítio e organomagnésio  2.4.2. Reações de acoplamento cruzado catalisadas por paládio  2.4.3. Complexos de Metais de Transição  2.4.4. Ligação metal-carbono  2.5. Química dos polímeros  2.5.1. Mecanismo de Polimerização  2.5.2. Características dos Polímeros  2.5.3. Polímero Biodegradável  2.5.4. Polímero condutor  2.5.5. Polímeros Supramoleculares  2.6. Química medicinal  2.6.1. Design e desenvolvimento de medicamentos  2.6.2. Farmacocinética e farmacodinâmica  2.6.3. Relações estrutura-atividade  2.6.4. Acoplamento Molecular e Triagem de Medicamentos
  3. Química inorgânica  3.1. Química de coordenação  3.1.1. Teoria do Campo Cristalino  3.1.2. Teoria do campo dos ligantes  3.1.3. Série Espectroquímica  3.1.4. Quelação e estabilidade  3.2. Química Organometálica  3.2.1. Carbonilos Metálicos  3.2.2. Catalise por complexos organometálicos  3.2.3. Metalocènicos  3.3. Química bioinorgânica  3.3.1. Metaloproteínas e enzimas  3.3.2. O papel dos metais em sistemas biológicos  3.3.3. Transporte e armazenamento de íons metálicos  3.4. Química do estado sólido  3.4.1. Estruturas Cristalinas  3.4.2. Teoria de bandas dos sólidos  3.4.3. Supercondutores  3.4.4. Defeitos no cristal  3.5. Lantanídeos e Actinídeos  3.5.1. Configuração eletrônica em lantanídeos e actinídeos  3.5.2. Química de coordenação dos lantanídeos  3.5.3. Propriedades Magnéticas dos Lantanídeos
  4. Química Analítica  4.1. Cromatografia  4.1.1. Cromatografia Gasosa  4.1.2. Cromatografia Líquida de Alta Performance  4.1.3. Cromatografia em Camada Delgada  4.2. Técnicas Espectroscópicas  4.2.1. Espectroscopia de absorção atômica  4.2.2. Difração de raios X  4.2.3. Espectroscopia de plasma acoplado indutivamente  4.3. Métodos Eletroanalíticos  4.3.1. Potenciometria  4.3.2. Voltametria  4.3.3. Colometria  4.4. Espectrometria de Massa  4.4.1. Técnica de Ionização  4.4.2. Padrão de Fragmentação  4.5. Quimiometria  4.5.1. Análise multidisciplinar  4.5.2. Aprendizado de Máquina em Química
  5. Química Teórica e Computacional  5.1. Simulação de dinâmica molecular  5.1.1. Campos de força e minimização de energia  5.1.2. Simulação de Monte Carlo em simulações de dinâmica molecular  5.2. Métodos de química quântica  5.2.1. Teoria de Hartree–Fock  5.2.2. Teoria do funcional da densidade  5.2.3. Métodos semi-empíricos  5.3. Design computacional de medicamentos  5.3.1. Acoplamento Molecular  5.3.2. Modelagem QSAR  5.3.3. Triagem Virtual
  6. Bioquímica  6.1. Cinética Enzimática  6.1.1. Cinética de Michaelis-Menten  6.1.2. Mecanismo de inibição  6.2. Metabolismo e Bioenergética  6.2.1. Glicólise  6.2.2. Ciclo do ácido cítrico  6.2.3. Cadeia de transporte de elétrons  6.3. Biologia Molecular  6.3.1. Replicação e reparo do DNA  6.3.2. Síntese de proteínas  6.3.3. Regulação Genética  6.4. Bioquímica Estrutural  6.4.1. Dobramento de Proteínas  6.4.2. Biofísica de Membranas
  7. Química Ambiental  7.1. Química Atmosférica  7.1.1. Gases de efeito estufa  7.1.2. Destruição da Camada de Ozônio  7.1.3. Poluentes do ar e fumaça  7.2. Química da Água  7.2.1. pH e dureza da água  7.2.2. Tratamento de águas residuais  7.2.3. Química Aquática  7.3. Química do Solo  7.3.1. Contaminação por metais pesados  7.3.2. pH do Solo e Capacidade Tamponante  7.3.3. Ciclo de nutrientes  7.4. Toxicologia e Segurança Química  7.4.1. Toxicocinética  7.4.2. Avaliação de Risco em Toxicologia e Segurança Química em Química Ambiental  7.4.3. Efeitos dos poluentes no ambiente

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Cromatografia em Camada Delgada


A cromatografia em camada delgada (CCD) é uma técnica cromatográfica usada para separar misturas não voláteis. É uma ferramenta poderosa no campo da química analítica, proporcionando um meio simples, rápido e econômico para identificar, analisar e separar componentes dentro de uma mistura. Este método pode ser usado para fins tanto qualitativos quanto quantitativos.

Princípio da cromatografia em camada delgada

A CCD é baseada no princípio da cromatografia de adsorção. Ela consiste em uma fase estacionária, que geralmente é uma placa revestida com uma fina camada de um material adsorvente, como gel de sílica, e uma fase móvel, que é um solvente ou uma combinação de solventes que se move para a fase estacionária por ação capilar. À medida que o solvente se move, ele carrega consigo vários componentes da mistura. Esses componentes movem-se a diferentes velocidades dependendo de sua adsorção na fase estacionária e de sua solubilidade na fase móvel.

Componentes da cromatografia em camada delgada

1. Fase estacionária

A fase estacionária na CCD é geralmente uma placa revestida com uma fina camada de um material adsorvente, como gel de sílica, alumina ou celulose. O gel de sílica é o adsorvente mais utilizado devido à sua alta polaridade, bom desempenho e disponibilidade. A placa pode ser de vidro, alumínio ou plástico, e a escolha da placa depende das exigências específicas do experimento.

2. Fase móvel

A fase móvel na CCD é o solvente ou a mistura de solventes que passa através da fase estacionária, carregando consigo os vários componentes da amostra. A seleção da fase móvel é importante, pois determina a eficiência da separação. Ela é escolhida com base na polaridade dos compostos a serem separados.

3. Amostra

A amostra é a mistura que contém os vários componentes a serem separados. Ela é colocada ou aplicada próximo à base da placa da fase estacionária. Se as substâncias forem incolores, técnicas de visualização podem ser necessárias para verificar os resultados.

Processo de cromatografia em camada delgada

  1. Preparação da placa de CCD: A placa de CCD é selecionada e preparada desenhando uma linha de base cerca de 1 cm a partir da parte inferior. Essa linha é onde a amostra será aplicada.
  2. Aplicação da amostra: Usando um tubo capilar ou uma seringa microlitro, uma pequena gota da amostra é aplicada na linha de base da placa de CCD.
  3. Desenvolvimento da placa: A placa é então cuidadosamente colocada em uma câmara de desenvolvimento contendo a fase móvel. Certifique-se de que o nível do solvente esteja abaixo da linha de base onde a amostra é aplicada.
  4. Visualização: Uma vez que a frente do solvente tenha percorrido uma distância suficiente, a placa é removida e deixada secar. No caso de compostos incolores, agentes de visualização como vapor de iodo ou luz UV podem ser necessários.
  5. Análise: Meça a distância percorrida por cada componente a partir da linha de base e a distância percorrida pela frente do solvente. O valor de Rf para cada componente é calculado usando a fórmula: 
    Rf = (distância percorrida pela substância) / (distância percorrida pela frente do solvente)

Aplicações da cromatografia em camada delgada

A CCD é amplamente utilizada em vários campos devido à sua versatilidade e facilidade de uso:

  • Identificação de compostos: A CCD pode identificar rapidamente compostos por comparação com substâncias conhecidas ou por meio de valores Rf específicos.
  • Teste de pureza: Observando as manchas na placa de CCD, a pureza da amostra pode ser determinada; manchas extras podem indicar impurezas.
  • Monitoramento de reações: A CCD é uma excelente ferramenta para monitorar o progresso das reações químicas, pois pode mostrar tanto os reagentes quanto os produtos.
  • Separação de extratos vegetais: Na farmacognosia e em estudos botânicos, a CCD é amplamente utilizada para separar extratos vegetais e identificar componentes.

Vantagens e limitações da cromatografia em camada delgada

Benefícios

  • A CCD é simples e barata comparada a técnicas cromatográficas mais avançadas, como HPLC ou GC.
  • Múltiplas amostras podem ser processadas de uma vez, economizando tempo.
  • As placas de CCD são descartáveis, reduzindo o risco de contaminação cruzada entre amostras.

Limitações

  • A CCD não fornece dados quantitativos altamente precisos.
  • A resolução da CCD pode não ser suficiente para componentes com características semelhantes.
  • Requer medições manuais, o que pode levar a erros humanos.

Cálculo de exemplo

Suponha que durante o experimento um composto se mova 3 cm na placa de CCD enquanto a frente do solvente se move 6 cm. O valor de Rf é calculado da seguinte forma:

Rf = (distância percorrida pela substância) / (distância percorrida pela frente do solvente) = 3 cm / 6 cm = 0.5

Um valor de Rf de 0.5 indica que o composto migrou até a metade da placa de CCD em relação à frente do solvente.

Representação visual

Considere uma configuração de CCD na qual a fase estacionária é representada por um retângulo e a fase móvel está se movendo para cima, carregando os componentes:

    
    
        
        
        
        Linha de base
        Frente do solvente
        
        Espaço da amostra

Nesta representação visual, o ponto azul simboliza o local da amostragem, enquanto as linhas grossas indicam a linha de base e a frente do solvente.

Conclusão

Devido à sua simplicidade e eficácia na separação de misturas, a cromatografia em camada delgada continua a ser uma técnica valiosa na química analítica. Apesar de suas limitações, ela fornece uma maneira rápida e eficiente de analisar, identificar e observar o comportamento de substâncias químicas em ambientes acadêmicos e profissionais.


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Cromatografia em Camada Delgada

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